Особливості розвитку та росту дочірніх рослинок у Kalanchoe daigremontiana (Raim.-Hamet & Perrier) A. Berger за дії складників ізатізону, композиції розчинників ДМСО та ПЕГ 400
Анотація
Мета. Дослідження адаптаційного морфогенезу в каланхое Дегремона при застосуванні складників Ізатізону, композиції розчинників ДМСО та ПЕГ 400 (D+P). Методи. Для дослідження впливу концентрації D+P на появу та розвиток дочірніх рослин було використано листки вибірки рослин каланхое однакового віку та походження, вирощених в лабораторних умовах методом ґрунтової культури. Для D+P було обрано такі ж величини розведення, як у попередньому дослідженню для Ізатізону [1]. Результати. Виявлено можливий вплив D+P як стресорів, яким притаманно спричиняти значний розмах мінливості щодо ініціації, розвитку та росту рослин у каланхое Дегремона. В залежності від концентрації та індивідуальної чутливості рослин, D+P виявили здатність як стимулювати, так і пригнічувати розвиток та ріст дочірніх рослин, але в більшості випадків такі ефекти не були статистично достовірними. Висновки. Стимулюючий ефект Ізатізону на процеси ініціації дочірніх рослин у каланхое та їх морфогенез і ростові процеси, виявлений нами раніше [1], зумовлюється, очевидно, N-метил ізатин β-тіосемікарбазоном – похідним ізатину, який є відомим фітогормоном.
Посилання
Katsan V. A., Potopalsky A. I., Zadorozhnii B. O. Influence of Izatison on growth and development of Plantlets in Kalanchoe Daigremontiana (Raim.-Hamet & Perrier) A. Berger. Factors in Experimental Evolution of Organisms. 2024. Vol. 35. P. 129–134. https://doi.org/107124/FEEO/V.35.1672. [in Ukrainian]
Zaika L. A., Bolsunova O. I., Potopalsky А. І. Antiviral, antitumor and immunomodulatory properties of the medicinal preparation Izatison. Kyiv : Kolobig, 2010. 211 p. [in Ukrainian]
Katsan V. A., Yurkevich L. N., Potopalsky A. I. Izatison and nanosilver are able to induce the changes in growth and productivity of oat plant cultivar Nezlamny persisting in the next generations. Factors in Experimental Evolution of Organisms. 2015. Vol. 16. P. 114–119. [in Ukrainian]
Kharina A. V., Kot T. G., Polischuk V. P., Zaets I. E., Chervatyuk N. V., Potopalsky A. I. Izatison as inhibitor of plant virus infections. Microbiology and Biotechnology. 2009. 2. P. 158–162. [in Ukrainian]
Potopalsky A. I., Katsan V. A., Yurkevich L. N., Lozyuk L. V. Method of increase of plant productivity and disease resistance: Patent for utility model 38265 Ukraine. No u200810756; applied on 28.08.2008, published on 25.12.2008, bulletin № 24. [in Ukrainian]
Katsan V. A., Potopalsky A. I., Zadorozhnii B. O. Influence of Izatison concentration on the growth and the grain productivity of the oat cultivar Nezlamni. Grail of Science. 2021. 5. P. 73–80. [in Ukrainian]
Galston A. W., Chen H. R. Auxin Activity of Isatin and Oxindole-3-Acetic Acid. Plant Phy. 1965. Vol. 40 (4). P. 699–705. https://doi.org/10.1104/pp.40.4.699.
Kutacek M., Galston A. W. The metabolism of 14C-labeled Isatin and Anthanilate in Pisum stem sections. Plant Phy. 1968. Vol. 43 (11). P. 1793–1798. https://doi.org/10.1104/pp.43.11.1793.
Mano Y., Nemoto K. The pathway of auxin biosynthesis in plants. J. Exp. Bot. 2012. Vol. 63 (8). P. 2853–2872. https://doi.org/10.1093/jxb/ers091.
Martynenko O. I., Kyrylenko T. K., Stepanyugin A. V., Plodnik D. P., Hovorun D. M. Quantitative estimation of genetically determined response in wheat leaves to the impact of chemical factors. Ukrainica Bioorganica Acta. 2013. Vol. 11 (2). P. 21–24. [in Ukrainian]
Sessa G., Carabelly M., Sassi M. The Ins and Outs of Homeodomain-Leucine Zipper/Hormone Networks in the Regulation of Plant Development. Int. J. Mol. Sci. 2024. Vol. 25 (11). 5657. https://doi.org/10.3390/ijms25115657.
Yue Wu, Lin Shi, Lei Li, Liwen Fu, Yanlin Liu, Yan Xiong, Jen Sheen Integration of nutrient, energy, light, and hormone signal-ling via TOR in plants. J Exp Bot. 2019. Vol. 70 (8). P. 2227–2238. https://doi.org/10.1093/jxb/erz028.
Liu H., Blanford J., Shi H., Schwender J., Shancling J., Zhai Z. The target of rapamycin kinase is a positive regulator of plant fatty acid and lipid synthesis. Plant Physiol. 2025. Vol. 197 (2). kiae639. https://doi.org/10.1093/plphys/kiae639.
D’alessandro S., Velay F., Lebrun R., Zafirov D., Mehrez M., Romand S., Saadouni R., Forzani C., Yterne S., […] Field B. Posttranslational regulation of photosynthetic activity via the TOR kinase in plants. Science Advances. 2024. Vol. 10 (25). eadj3268. https://doi.org/10.1126/sciadv.adj3268.
Tuncer S., Gurbanov R., Sheraj I., Solel I., Esenturk O., Banerjee S. Low dose dimethyl sulfoxide driven gross molecular changes have the potencial to interfere with various cellular processes. Sci. Reports. 2018. Vol. 8 (1). 14828. https://doi.org/10.1038/s41598-018-33234-z.
Sajid M., Ahmed S., Sardar R., Ali A., Yasin N. A. Role of polyethylene glycol to alleviate lead stress in Raphanus sativus. Peer J. 2025. Vol. 13. e18147. http://doi.org/10.7717/peerj.18147.
Zhao Q., Xiong H., Yu H., Wang C., Zhang S., Hao J., Wang J., Zhang H., Zhang L. Function of MYB8 in larch under PEG simulated drought. Scientifc Reports. 2024. Vol. 14:112190. https://doi.org/10.1038/s41598-024-61510-8.
Garcês H. M. P., Koenig D., Townsley B. T., Kim M., Sinha N. R. Truncation of LEAFY COTYLEDON1 protein is required for asexual reproduction in Kalanchoë daigremontiana. Plant Physiology. 2014. Vol. 165 (1). P. 196–206. https://doi.org/10.1104/pp.114.237222.
Zhu Ch., Wang L., Chen J., Liu Ch., Zeng H., Wang H. Over-expression of KdSOC1 gene affected plantlet morphogenesis in Kalanchoe daigremontiana. Scientific Reports. 2017. Vol. 7 (1). 5629. https://doi.org/10.1038/s41598-017-04387-0.
