Прискорення розмноження вихідного матеріалу для селекції сорбоїдних культур Sorbus Sensu Lato

  • М. В. Небиков Національний дендрологічний парк «Софіївка» НАН України, Україна, 20300, м. Умань, вул. Київська, 12а https://orcid.org/0000-0001-9734-1730
  • А. І. Опалко Національний дендрологічний парк «Софіївка» НАН України, Україна, 20300, м. Умань, вул. Київська, 12а https://orcid.org/0000-0003-0664-378X
  • Т. А. Небикова Уманський державний педагогічний університет імені Павла Тичини, Україна, 20300, м. Умань, вул. Садова, 2 https://orcid.org/0000-0002-6872-617X
  • О. А. Опалко Національний дендрологічний парк «Софіївка» НАН України, Україна, 20300, м. Умань, вул. Київська, 12а https://orcid.org/0000-0003-3081-0648
DOI: https://doi.org/10.7124/FEEO.v35.1655
Ключові слова: морфогенез in vitro, адаптація ex vitro, щеплення, мікророзмноження, горобина

Анотація

Мета. Перманентне зростання інтересу до горобини та інших наразі недооцінених сорбоїдних культур Sorbus sensu lato, спонукали до пошуку способів вдосконалення техніки прискореного розмноження найбільш цінних для селекції генотипів. Методи. У досліди було залучено 3-7-річні рослини Sorbus sensu lato колекції Національного дендрологічного парку «Софіївка» НАН України. Статистичний аналіз дослідних даних проводили за Рональдом Фішером. Результати. З’ясувалось, що схожість насіння Sorbus sensu lato залежала від способу підготовлення насіння, натомість результативність щеплення більше залежала від методу щеплення, аніж від генотипу прищепи. Використання модифікованих нами МС-середовищ дало змогу отримувати достатні для ефективного мікророзмноження коефіцієнти клоноутворення (6,6-7,9), індукувати морфогенез з виходом 59,9-88,8 % укорінених мікроклонів, а також досягати стабільних результатів адаптації вивчених Sorbus sensu lato до нестерильних умов ex vitro як у торф’яних дисках (69,1-90,3 %), так і в контейнерах з ґрунтосумішами (70,4-93,0 %). Висновки. Отримані в багаторічних дослідах результати порівняння способів прискореного розмноження вихідного матеріалу для селекції сорбоїдних культур засвідчили переваги мікроклонального розмноження й перспективи введення ланки мікророзмноження у селекційну практику й розсадництво найбільш цінних для садівництва Sorbus sensu lato.

Посилання

Mezhenskyj V. M., Mezhenska L. O., Melnichuk M. D., Yakubenko B. Ye. Rare Fruit Crops: recommendations on breeding and propagation. Kyiv : Phytosociocentre, 2012. 80 p. [in Ukrainian]

Nebykov M., Nebykova T. Micropropagation of mountain ash (Sorbus spp.) specimens of the National dendrological park “Sofiyivka” collection. Journal of Native and Alien Plant Studies. 2022. Vol. 18. P. 137–155. doi: 10.37555/2707-3114.18.2022.269971. [in Ukrainian]

Sołtys A., Galanty A., Podolak I. Ethnopharmacologically important but underestimated genus Sorbus: a comprehensive review. Phytochemistry Review. 2020. Vol. 19. P. 491–526. doi: 10.1007/s11101-020-09674-9.

Liu T., Wang J., Zhou S., Zhai Y., Wu X. Geographic variation in progeny: climatic and soil changes in offspring size and colour in four Sorbus spp. (Rosaceae). Forests. 2023. Vol. 14, No. 12. P. 2390 (1–16). doi: 10.3390/f14122390.

Tartaglia M., Zuzolo D., Prigioniero A., Ranauda M. A., Scarano P., Tienda-Parrilla M., Guarino C. Proteomics and metabolomics analysis of Cormus domestica (L.) fruits and the valorisation of an ethnobotanical heritage of culinary and medicinal uses in Mediterranean area. BMC Plant Biology. Research Square. Search preprints. 2024. P. 1–25. doi: 10.21203/rs.3.rs-3782457/v1.

Arvinte O. M., Senila L., Becze A., Amariei S. Rowanberry – a source of bioactive compounds and their biopharmaceutical properties. Plants. 2023. Vol. 12 (18). P. 3225 (1–25). doi: 10.3390/plants12183225.

GENUS Sorbus L. WFO Plant List. Check a plant name. Snapshots of the taxonomy. URL: https://wfoplantlist.org/taxon/wfo-4000035797-2023-12?page=1. (As classified in WFO snapshot December 2023 latest classification for this taxon).

Sorbus L., Sp. Pl. 1: 477 (1753). International Plant Names Index. The Royal Botanic Gardens, Kew, Harvard University Herbaria & Libraries and Australian National Herbarium. Retrieved from: https://www.ipni.org/n/30004837-2.

Lepší M., Koutecký P., Nosková J., Lepší P., Urfus T., Rich T. C. Versatility of reproductive modes and ploidy level interactions in Sorbus sl (Malinae, Rosaceae). Botanical Journal of the Linnean Society. 2019. Vol. 191 (4). P. 502–522. doi: 10.1093/botlinnean/boz054.

Wu Y., Yu X., Tang W., Yang W., Fu Q., Zheng Y., Zhang C. Morphological and molecular evidence for natural hybridization between Sorbus pohuashanensis and S. discolor (Rosaceae). Journal of Forestry Research. 2024. Vol. 35. Art. 25. P. 1–13. doi: 10.1007/s11676-023-01659-6.

Linnaeus C. Species plantarum. Holmiae. Vol. 1. Stockholm : Impensis Laurentii Salvii, 1753. P. 475–480.

Kurtto A., Sennikov A. N., Lampinen R. Atlas Florae Europaeae. Distribution of vascular plants in Europe. 17. Rosaceae (Sorbus s. lato). Helsinki : The Committee for Mapping the Flora of Europe & Societas Biologica Fennica Vanamo, 2018. 132 p.

Fay M. F., Rich T. C. Rowans, whitebeams and service trees. Curtis’s Botanical Magazine. 2022. Vol. 39 (4). P. 621–630. doi: 10.1111/curt.12485.

Rushforth K. 827. Sorbus henryi. Rosaceae. Curtis's Botanical Magazine. 2016. Vol. 33 (1). P. 67–73. doi: 10.1111/curt.12129.

Li M., Ohi-Toma T., Gao Y. D., Xu B., Zhu Z. M., Ju W. B., Gao X. F. Molecular phylogenetics and historical biogeography of Sorbus sensu stricto (Rosaceae). Molecular Phylogenetics and Evolution. 2017. Vol. 111. P. 76–86. doi: 10.1016/j.ympev.2017.03.018.

Bartolucci F., Peruzzi L., Galasso G., Albano A., Alessandrini A. N. M. G., Ardenghi N. M. G., Conti F. An updated checklist of the vascular flora native to Italy. Plant Biosystems, 2018. Vol. 152 (2). P. 179–303. doi: 10.1080/11263504.2017.1419996.

Stace C. A. New flora of the British Isles (Ed. 4). Manchester : C & M Floristics, 2019. 1266 p.

Mezhenskyj V. M., Mezhenska L. O. Genetic resources of fruit and ornamental crops. Part 1. Kyiv : Lira-K, 2023. 694 p.

Opalko O., Kucher N., Andrienko O., Nebykov M., Serzhyk O., Konopelko A., Opalko A. The pome fruit (Malinae Rev.) collections of the National dendrological park “Sofiyivka” of NAS of Ukraine. International Conferences “Plant Diversity: Status, Trends, Conservation Concept” 2020. BIO Web of Conferences. 2020. Vol. 24. P. 00065 (1–5). doi: 10.1051/bioconf/20202400065.

He C., Zeng Y., Fu Y., Wu J., Liang Q. Light quality affects the proliferation of in vitro cultured plantlets of Camellia oleifera Huajin. PeerJ. 2020. Vol. 8. P. e10016 (1–20). doi: 10.7717/peerj.10016.

Fisher R. A. Statistical methods for research workers. New Delhi : Cosmo Publications, 2006. 354 p.

Tang Y., Zhang K., Zhang Y., Tao J. Dormancy-breaking and germination requirements for seeds of Sorbus alnifolia (Siebold & Zucc.) K. Koch (Rosaceae), a mesic forest tree with high ornamental potential. Forests. 2019. Vol. 10 (4). P. 319 (1–12). doi: 10.3390/f10040319.

Read P. E., Bavougian C. M. In vitro rejuvenation of woody species. Protocols for micropropagation of selected economically-important horticultural plants. [Eds.: Maurizio Lambardi et al.]. Helsinki : Humana Press, 2013. Series: Methods in Molecular Biology. Vol. 994. Ch. 30. P. 383–395. doi: 10.1007/978-1-62703-074-8_30.