Вплив пригнічення внутрішньої мікрофлори тетрацикліном на рівень прояву гібридного дисгенеза Drosophila melanogaster

  • И. Д. Городнянский
  • Л. И. Воробьева
DOI: https://doi.org/10.7124/FEEO.v22.920

Анотація

Мета. Оцінити зміни частоти прояви гібридного дисгенеза в лінії Oregon-R Drosophila melanogaster, що спостерігаються під впливом тетрацикліну. Методи. Досліджували лінію Drosophila melanogaster Oregon R (Cambridge), в геномі якої присутні повнорозмірні і функціонально активні копії МГЕ hobo. Також надана лінія інфікована вольбахією штаму wMel. Видалення вольбахії з організму здійснювали за допомогою антибіотика тетрацикліну. Рівень гібридного дисгенеза досліджували методом вилучення гонад мух і оцінки їх стану. Результати. У статті представлено результати вивчення впливу пригнічення внутрішньої мікрофлори Drosophila melanogaster – зокрема, паразитичної бактерії Wolbachia pipientis – на рівень прояву гібридного дисгенеза. Після впливу тетрацикліну спостерігали значне підвищення частки дісгенних особин всередині лінії. Висновки. Отримані результати можуть бути пов'язані з порушенням системи специфічних взаємодій організму-господаря і внутрішньої мікрофлори.

Ключові слова: мобільні генетичні елементи, гібридний дисгенез, Drosophila melanogaster, Wolbachia pipientis.

Посилання

Vasil'eva L.A., Antonenko O.V., Zakharov I.K. The role of mobile genetic elements in the genome of Drosophila melanogaster. Vavilovskiy zhurnal genetiki i selektsii. 2011. Vol. 15, No. 2. P. 225–260.

Pimpinelli S., Berloco M., Fanti L., Dimitri P., Bonaccorsi S., Marchetti E., Caizzi R., Caggese C., Gatti M. Transposable elements are stable structural components of Drosophila melanogaster heterochromatin. Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA. 1995. Vol. 92. P. 3804–3808.

Fry A.J., Palmer M.R., Rand D.M. Variable fitness effects of Wolbachia infection in Drosophila melanogaster. Heredity. 2004. P. 1–11.

Weeks A.R., Turelli M., Harcombe W.R., Reynoilds K.T., Hoffmann A.A. From parasite to mutualist: rapid evolution of Wolbachia in natural populations of Drosophila. PLoS Biology. 2007. Vol. 5, No. 7. P. 997–1005. doi: 10.1371/journal.pbio.0050114

Wu M., Sun L.V., Vamathevan J. et al. Phylogenomics of the reproductive parasite Wolbachia pipientis wMel: a streamlined genome overrun by mobile genetic elements. PLoS Biology. 2004. Vol. 2, No. 3. P. 0327–0341. doi: 10.1371/journal.pbio.0020069

Kondo N., Nikoh N., Ijichi N., Shimada M., Fukatsu T. Genome fragment of Wolbachia endosymbiont transferred to X chromosome of host insect. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2002. Vol. 99, № 22. P. 14280–14285. doi: 10.1073/pnas.222228199

Borhershtein S.R., Marshall M.R., Fry A.J., Kim U., Wernegreen J.J. The tripartite association between bacteriophage, Wolbachia and Arthropods. PLoS Pathogens. 2006. Vol. 2, Iss. 5. P. 384–393 doi: 10.1371/journal.ppat.0020043

Serga S.V., Demidov S.V., Kozeretskaya I.A. Infection with Wolbachia does not affect the frequency of crossing-over in Drosophila melanogaster. Genetics and cytology. 2010. No. 42. P. 55–60.

Poinsot D., Charlat S., Mercot H. On the mechanism of of Wolbachia-induced cytoplasmic incompatibility: confronting the models with the facts. BioEssays. 2003. Vol. 25. P. 259–265.

Belousov A.O., Kozeretskaya I.A. Symbiotic bacteria modifying the reproductive processes in Drosophila melanogaster. Microbiology journal. 2011. Vol. 73, No. 2. P. 43–52.

Werren J.H., Baldo L., Clark M.E. Wolbachia: master manipulators of invertebrate biology. Nature reviews Microbiology. 2008. Vol. 6. P. 741–751. doi: 10.1038/nrmicro1969