Вплив 1-нафтилоцтової та індол-3-оцтової кислоти на інтенсивність калюсогенезу і органогенезу Linum usitatissimum L. в умовах in vitro

  • С. В. Міщенко Інститут луб'яних культур НААН
DOI: https://doi.org/10.7124/FEEO.v28.1383

Анотація

Мета. Дослідження впливу ауксинів екзогенного походження за сталої концентрації
6-бензиламінопурину (БАП) у живильному середовищі на інтенсивність калюсоутворення й органогенезу Linum usitatissimum L. convar. elongatum (сорт Глінум) в умовах in vitro.
Методи. Гіпокотильні сегменти культивували на живильному середовищі Мурасіге і Скуга з додаванням 30 г/л сахарози і різних концентрацій фітогормонів, за фотоперіоду 16 год, відносної вологості повітря 60–80 %, температури повітря 22–24°С. Результати. Льон звичайний значною мірою здатний до утворення калюсу і пагонів за впливу: 1) лише ауксинів; 2) лише цитокінінів; 3) комбінації ауксинів і цитокінінів. Соматичний ембріогенез можливий також на безгормональному середовищі. Висновки. Для соматичного ембріогенезу in vitro оптимальні концентрації БАП можна виразити нерівністю 1,0 ≤ БАП ≤ 1,75; оптимальні концентрації БАП за умови додавання до живильного середовища 0,05 мг/л 1-нафтилоцтової кислоти (НОК) – нерівністю 0,5 ≤ БАП ≤ 2,0; оптимальні концентрації НОК за умови додавання до середовища 1,0 мг/л БАП – нерівністю 0,025 ≤ НОК ≤ 0,150; оптимальні концентрації індол-3-оцтової кислоти (ІОК) за умови додавання до середовища 1,0 мг/л БАП – нерівністю 0,05 ≤ ІОК ≤ 0,50.

Ключові слова: Linum usitatissimum L., in vitro, фітогормони, калюс, органогенез.

Посилання

Anjum S., Abbasi B.H., Hano C. Trends in accumulation of pharmacologically important antioxidant-secondary metabolites in callus cultures of Linum usitatissimum L. Plant Cell Tiss Organ Cult. 2017. Vol. 129 (1). P. 73–87. doi: 10.1007/s11240-016-1158-3.

Khan I., Khan M.A., Shehzad M.A. et al. Micropropagation and production of health promoting lignans in Linum usitatissimum. Plants. 2020. Vol. 9 (6), 728. P. 1–18. doi: 10.3390/plants9060728.

Zahir A., Nadeem M., Ahmad W. et al. Chemogenic silver nanoparticles enhance lignans and neolignans in cell suspension cultures of Linum usitatissimum L. Plant Cell Tiss Organ Cult. 2019. Vol. 136 (3). P. 589–596. doi: 10.1007/s11240-018-01539-6.

Salazar-Iribe A., De-la-Peña C. Auxins, the hidden player in chloroplast development. Plant Cell Rep. 2020. Vol. 39. P. 1595–1608. doi: 10.1007/s00299-020-02596-y.

Blinstrubienė A., Burbulis N., Kuprienė R. Effect of genotype and medium composition on linseed (Linum usitatissimum) ovary culture. Biologia. 2011. Vol. 66 (3). P. 465–469. doi: 10.2478/s11756-011-0028-z.

Burbulis N., Blinstrubienė A. Genotypic and exogenous factors affecting linseed (Linum usitatissimum L.) anther culture. J. Food, Agricult. Environ. 2011. Vol. 9 (3–4). P. 364–367. doi: 10.1234/4.2011.2285.

Burbulis N., Blinstrubienė A., Masienė R., Jonytienė V. Influence of genotype, growth regulators and sucrose concentration on linseed (Linum usitatissimum L.) anther culture. J. Food, Agricult. Environ. 2012. Vol. 10 (3–4). P. 764–767. doi: 10.1234/4.2012.3509.

Janowicz J., Niemann J., Wojciechowski A. The effect of growth regulators on the regeneration ability of flax (Linum usitatissimum L.) hypocotyl explants in in vitro culture. BioTechnologia. 2012. Vol. 93 (2). P. 135–138. doi: 10.5114/bta.2012.46578.

Siegień I., Adamczuk A., Wróblewska K. Light affects in vitro organogenesis of Linum usitatissimum L. and its cyanogenic potential. Acta Physiol Plant. 2013. Vol. 35 (3). P. 781–789. doi: 10.1007/s11738-012-1118-4.

Sakhare S.P., Mendhulkar V.D. Embryo excised callus induction and rhizogenesis in Linum usitatissimum L. Int. J. Pharm. Bio. Sci. 2016. Vol. 7 (3). P. 507–511.

Blinstrubienė A., Burbulis N., Masienė R. Genotypic and exogenous factors affecting linseed ovary culture. Zemdirbyste-Agriculture. 2017. Vol. 104 (3). P. 243–248. doi: 10.13080/z-a.2017.104.031.

Mishchenko S., Kryvosheeva L. Possibility of reproduction of Linum usitatissimum L. from seeds with low germination and viability in vitro conditions. Agrobiodiversity for Improving Nutrition, Health and Life Quality. 2019. Vol. 3. P. 304–311. doi: 10.15414/agrobiodiversity.2019.2585-8246.304-311.

Yildiz M., Sağlik C., Telci C., Erkilich E.G. The effect of in vitro competition on shoot regeneration from hypocotyl explants of Linum usitatissimum. Turk. J. Bot. 2011. Vol. 35 (2). P. 211–218. doi: 10.3906/bot-1005-26.

Beyaz R., Yildiz M. The effect of inter-plantal competition on in vitro seed germination and seedling growth in flax (Linum usitatissimum L.). Eskişehir Technical Univ. J. of Sci. and Tech. C – Life Sci. and Biotech. 2019. Vol. 8 (1). P. 61–68. doi: 10.18036/aubtdc.427128.

Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 1962. Vol. 15 (3). P. 473–497. doi: 10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x.

Mishchenko S.V. Influence of 6-benzylaminopurine on intensity of callusogenesis and organogenesis of Linum usitatissimum L. under in vitro conditions. The Bulletin of Kharkiv National Agrarian University. Series Biology. 2019. Vol. 2 (47). P. 92–100. doi: 10.35550/vbio2019.02.092. [in Ukrainian]

Seta-Koselska A., Skórzyńska-Polit E. Optimization of in vitro culture conditions for obtaining flax (Linum usitatissimum L. cv. Modran) cell suspension culture. BioTechnologia. 2017. Vol. 98 (3). P. 183–188. doi: 10.5114/bta.2017.70796.