Сучасні технології підвищення стійкості культивованих in vitro рослин до умов ex vitro

  • Л. Р. Грицак
  • Н. М. Дробик

Анотація

Мета. Проаналізувати досвід вітчизняних та зарубіжних учених щодо технологій підвищення адаптивного потенціалу культивованих in vitro рослин до умов ex vitro. Результати. Сучасні акліматизаційні технології спрямовані, переважно, на удосконалення методів адаптації посадкового матеріалу колекцій in vitro умов до ex vitro. Значно менше уваги приділяється технологіям підвищення стійкості рослин на етапі їх мультиплікації та росту in vitro. Інтеграція та систематизація результатів досліджень низки вчених дозволила описати основні стратегії та методичні прийоми, реалізація яких дозволяє суттєво підвищити адаптивний потенціал рослин в умовах in vitro. Висновки. Оптимізацією фізико-хімічних умов культивування рослин на етапі in vitro можна індукувати зміни їх фенотипу, інтенсивності фотосинтетичних реакцій, водного балансу, що підвищує адаптаційний потенціал рослин та полегшує процес їх акліматизації до умов ex vitro.

Ключові слова: рослини in vitro, акліматизація до умов ex vitro, адаптивний потенціал, технологія

Посилання

Medvedyeva T.M. Problemy aklimatyzatsiyi kul'tyvovanykh in vitro roslyn. Fyzyolohyya y byokhymyya kul'turnykh rastenyy. 2008. Vol. 40 (1). P. 299–309 [in Ukrainian]

Clapa D., Fira A., Joshee N. An Efficient Ex Vitro Rooting and Acclimatization Method for Horticultural Plants Using Float Hydroculture. Horticultural Science. 2013. Vol. 48 (9). P. 1159–1167.

Ubalua A. O, Okoroafor U. E. Micropropagation and postflask management of sweet potato using locally available materials as substrates for hardening. Plant Knowledge Journal. 2013. Vol. 2(2). P. 56–61. Accessed from: http://www.sciencej.com/alfred_2_2_2013_56_61.pdf

Kodun-Ivanova M.A. Indicators of water-stress of microclonal aspen Populus tremula to the ex vitro conditions. Trudy BHTU. 2017. Sеr. 1, No. 2. P. 146–155 [in Russian]

Ubalua A. O., Nsofor G. C. The role of supporting substrates in ex vitro acclimatization and growth of tissue cultured cassava plantlets. Plant Knowledge Journal. 2017. Vol. 6 (1). P. 1–6. doi: 10.21475/pkj.06.01.17.p7910

Ivanova-Khanina L.V. Influence the composition of substrate on survival rate of microplants of Vitis vinifera L. in vivo. Ekosystemy. 2018. Vol. 13 (43). P. 84–88 [in Russian]

Isah T. Adjustments to in vitro culture conditions and associated anomalies in plants. Acta biologica Cracoviensia. Series Botanica. 2015. Vol. 57(2). P. 9–28. doi: 10.1515/abcsb-2015-0026

da Silva T. J. A., Hossain M. ., Sharma M. et al. Acclimatization of in vitro-derived Dendrobium. Horticultural Plant Journal. 2017. Vol 3 (3). P. 110–124. doi: 10.1016/j.hpj.2017.07.009

Batista D. S., Felipe S. H. S., Silva T. D. et al. Light quality in plant tissue culture: does it matter? In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant. 2018. Vol. 54 (3). P. 195–215. doi.: 10.1007/s11627-018-9902-5

Hazarika B. N., Bora A. Use of bio-agents in acclimatizing micropropagated plants - a review. Agricultural Reviews. 2006. Vol. 27 (2). P. 152–156.

Eckstein A., Zieba P., Gabrys H. Sugar and light effects on the condition of the photosynthetic apparatus of Arabidopsis thaliana cultured in vitro. Journal of Plant Growth Regulation. 2012. Vol. 31 (1). Р. 90–101

Gago J., Martínez-Núñez L., Landín M., Flexas J., Gallego P. P. Modeling the Effects of Light and Sucrose on In Vitro Propagated Plants: A Multiscale System Analysis Using Artificial Intelligence Technology. PLoS ONE. 2014. 9, e85989. doi: 10.1371/journal.pone.0085989

Trejgell A., Tretyn A. Shoot multiplication and in vitro rooting of Carlina onopordifolia Basser. Acta Biologica Cracoviensia. Series Botanica. 2011. Vol. 53 (2). P. 68–72. doi: 10.2478/v10182-011-0026-z

Vechernyna N.A., Tavartkyladze O.K., Borodulyna Y.D., Erst A.A. Adaptatsiya rasteniy-rehenerantov k usloviyam vyrashchivaniya ex vitro. Sovremennye tendentsii razvitiya promyshlennoho sadovodstva : materialy nauch.-prakt. konf., posvyashch. 75-letiyu obrazovaniya NII sadovodstva Sybiri imeni M. A. Lisavenko (Barnaul, 18-23 avh. 2008). Barnaul, 2008. P. 355–360 [in Russian]

Sheela C., Rajib B., Vijay K., Ramesh C. Acclimatization of tissue cultured plantlets: from laboratory to land. Biotechnology Letters. 2010. Vol. 32. P. 1199–1205. doi: 10.1007/s10529-010-0290-0.

Ávila-Juárez L., Torres-Pacheco I., Ocampo-Velázquez R. V., Feregrino-Pérez A. A., CruzHernández A., Guevara-González R. G. Integrating plant nutrients and elicitors for production of secondary metabolites, sustainable crop production and human health : A review. International Journal of Agriculture & Biology. 2017. Vol. 19. P. 391‒ 402. doi: 10.17957/IJAB/15.0297

Pykalo S.V., Dubrovna O.V. Tolerance to abiotic stressors of r1 plants of triticale obtained by cell selection. Visnyk Kharkivs'koho natsional'noho ahrarnoho universytetu. Seriya «Biolohiya». 2015. Vol. 3 (36). P. 76–82. [in Ukrainian]

Musienko M.M., Zhuk I.V. Molecular mechanisms of induction of protective plant reactions to drought effect. Ukr. botan. zhurn. 2009. Vol. 66 (4). P. 580–595. [in Ukrainian]

Kolupaev Yu.E., Vayner. A.A., Yastreb T.O. Proline: physiological functions and regulation of its content in plants under stress conditions. Visnyk Kharkivs'koho natsional'noho ahrarnoho universytetu. Seriya «Biolohiya».2014. Vol. 2 (32). P. 6–22 [in Ukrainian]

Bisht S. S., Bisht A. S., Chauhan R. S. In-vitro Mutagenesis Induction to Improve Abiotic Stress in Tissue Cultured Plantlet of Picrohiza kurroa Royle ex. Benth: An Endangered Plant of Western Himalayas. India Medical and Aromatic Plants (Los Angel). 2017. Vol. 6 (2). Article ID: 287. doi: 10.4172/2167-0412.1000287.

Banas A. K., Gabrys H. Influence of sugars on blue light-induced chloroplast relocations. Plant Signaling & Behavior. 2007. Vol. 2 (4). Р. 221–230. doi: 10.4161/psb.2.4.4392

Oliveira L., Cardoso M. N., Oliveira A., Machado C., Cardoso B., Silva A., Lédo A. Effects of in vitro Drought Stress on Growth, Proline Accumulation and Antioxidant Defense in Sugarcane. Journal of Agricultural Science. 2018. Vol 10 (5). P. 135–149. doi: 10.5539/jas.v10n5p135

Xu Y., Huang B. Exogenous Ascorbic Acid Mediated Abiotic Stress Tolerance in Plants. Ascorbic Acid in Plant Growth, Development and Stress Tolerance / Hossain M., Munné-Bosch S., Burritt D., Diaz-Vivancos P., Fujita M., Lorence A. (eds). Springer, Cham, 2017. P. 233–253

Zelenyanska N.M. Antitranspirants for a successful adaptation of grape Microclones. Naukovi dopovidi Natsional'noho universytetu bioresursiv i pryrodokorystuvannya Ukrayiny. 2013. Vol. 2 (38). Accessed from: http://nbuv.gov.ua/UJRN/Nd_2013_2_4 [in Ukrainian]

Li H., Tang C., Xu Z. Effects of different light quality on growth, photosynthetic characteristic and chloroplast ultrastructure of upland cotton (Gossypium hirsutum L.) seedlings. Emirates Journal of Food and Agriculture. 2017. Vol. 29 (2). P. 104–113. doi: 10.9755/ejfa.2016-10-1387

Trivedi A., Sengar R. S. Effect of various light-emittimg diodes on growth and photosynthetic pigments of banana (Musa acuminata) CV. grande naine in vitro plantlets. International Journal of Chemical Studies. 2017. Vol. 5 (5). P. 1819–1821. Accessed from: https://www.researchgate.net/publication/333652559

Hrytsak L.R., Herts A.I., Nuzhyna N.V., Cryk M.M., Shevchenko V.V., Drobyk N.M. The influence of light regime on the growth data and pigment composition of the plant Gentiana lutea L. cultured in vitro. Regulatory Mechanisms in Biosystems. 2018. Vol. 9 (2). P. 258–266 [in Ukrainian]

Muneer S., Kim E. J., Park J. S., Lee J. H. Influence of green, red and blue light emitting diodes on multiprotein complex proteins and photosynthetic activity under different light intensities in lettuce leaves (Lactuca sativa L.). Internation Journal of Molecular Science. 2014. Vol. 15 (3). P. 4657–4670. doi: 10.3390/ijms15034657

Yablonskaya M.I., Gins M.S., Molchanova M.A. In vitro biotization. Vestnyk RUDN. Seryya «Ahronomyya y zhyvotnovodstvo». 2016. No. 1. P. 15–20 [in Russian]

Tkachenko O. V., Evseeva N. V., Boikova N. V. et al. Improved potato microclonal reproduction with the plant growth-promoting rhizobacteria Azospirillum. Agronomy for Sustainable Development. 2015. Vol. 35. P. 1167–1174. doi: 10.1007/s13593-015-0304-3f

Tseplyaev A.N., Treshchevskaya E.I., Turtanova E.N. Experience of growth in containers of the planting material received by the method of clonal propagation in vitro. Lesotekhnycheskyy zhurnal. 2018. Vol. 8 (3). P. 124–130. [in Russian]