Явище вітрифікації при розробці технології клонального мікророзмноження рідкісної рослини Salvia scabiosifolia Lam.

  • А. В. Голубенко
  • Н. В. Нужина

Анотація

Мета. Порівняння анатомічної будови нормальних та вітрифікованих in vitro-рослин Salvia scabiosifolia Lam.; підбір регуляторів росту в живильному середовищі для мінімалізації (редукції) вітрифікації. Методи. Застосовано методи культури in vitro. Рослини вирощували на живильному середовищі МС, доповненому ІОК, НОК та БАП у різних поєднаннях концентрацій. Анатомічні зрізи листків завтовшки 10 мкм забарвлювали ацетоорсеїном та сафраніном. Результати. Виявлено анатомічні відмінності між будовою нормальних і вітрифікованих листків Sscabiosifolia. Мінімального рівня вітрифікації та високої ефективності утворення нормальних пагонів було досягнуто на живильних середовищах, доповнених: 0,2 мг/л ІОК + 1 мг/л БАП; 0,2 мг/л ІОК + 2,5 мг/л БАП; 0,2 мг/л ІОК + 0,1 мг/л НОК + 2 мг/л БАП. Висновки. Анатомічні особливості будови вітрифікованих листків свідчать про порушення транспірації, швидкості поділу і росту клітин епідермісу та мезофілу. Знизити рівень вітрифікації можна, змінюючи вміст регуляторів росту в середовищі. Провідну роль у виникненні вітрифікації регенерантів S. scabiosifolia відіграють ауксини, а поєднання їх з цитокінінами викликають суттєве її зниження.

Ключові слова: Salvia scabiosifolia Lam., in vitro, анатомія рослин, вітрифікація, ауксини, БАП.

Посилання

Chervona knyha Ukrayiny. Roslynnyy svit / za red. Didukha Ya. P. K.: Hlobalkonsaltynh, 2009. 900 p. [in Ukrainian]

Debergh P.C. Effects of agar brand and concentration on the tissue culture medium Physiologia plantarum. 1983. Vol. 59 (2). P. 270–276. https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1983.tb00770

Gaspar T., Franck T., Bisbis B., Kevers C., Jouve L., HausmanJ. F., Dommes J. Concepts in plant stress physiology. Applica-tion to plant tissue cultures. Plant Growth Regulation. 2002. Vol. 37. P. 263–285.

Fahy G.M., MacFarlane D.R., Angell C.A., Meryman H.T. Vitrification as an approach to cryopreservation. Cryobiol. 1984. 21. P. 407–426.

Hammerschlag F.A. Temperate fruits and nuts. In: “Tissue culture as a plant production system for horticultural crops”, Zim-merman R.H., Griesbach R.J., Hammerschlag F.A. and Lawson R.H. (eds). Martinus hoff Publishers, Dordrecht. 1986. P. 221–236.

Pasqualetto P.-L. Vitrification in Plant Tissue Culture. In: “Plant Aging”. Rodríguez R., Tamés R.S., Durzan D.J. (eds) NATO ASI Series (Series A: Life Sciences) Springer, Boston, MA. 1990. Vol. 186. P. 133–137. https://doi.org/10.1007/978-1-4684-5760-5_16.

Chandrika R., Shivakameshwari M.N., Thara Saraswathi K.J. Reduction of vitrification in in vitro shoot cultures of Eryngium foetidum L. – a potential aromatic and medicinal herb. Indian Journal of Plant Sciences. An Open Access, Online International Journal. 2015. Vol. 4 (2). P. 52–58. URL: http://www.cibtech.org/jps.htm (last accessed: 02.08.2019).

Kushnir H.P., Sarnatsʹka V.V. Mikroklonalʹne rozmnozhennya roslyn. K.: Naukova dumka, 2005. 272 p. [in Ukrainian].

Mel’nychuk M.D., Novak T.V., Kunakh V.A. Biotekhnolohiia roslyn. Kyiv: Polihraf Konsaltyng, 2003. 520 p. [in Ukrainian]

Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol. plant. 1962. Vol. 15. P. 473–497.

Romeis B. Mikroskopische Technik. München: R. Oldenbourg, 1948. 695 p.

Zakharevich S.F. K metodike opisaniya lista. Vestnik Leningradskogo universiteta. 1954. No 4. P. 65–75. [in Russian]

Baranova M.A. Klassifikatsiya morfologicheskikh tipov ust'its. Botanicheskiy zhurnal. 1985. V. 70, No 12. P. 1585–1595. [in Russian]