Використання апікальних меристем молодих проростків для індукції калюсогенезу Triticum spelta L. та T. aestivum L.

  • А. В. Кирієнко
  • М. Ф. Парій
  • Ю. В. Симоненко
  • М. В. Кучук
  • Н. Л. Щербак
DOI: https://doi.org/10.7124/FEEO.v25.1169

Анотація

Мета. Розробка ефективної системи калюсогенезу із експлантів апікальних меристем для гексаплоїдної пшениці, зокрема спельти (Triticum spelta L.). Методи. Рослинним матеріалом для роботи обрано генотип спельти «Європа» та пшениці м’якої «Бунчук».У якості експлантів використовували апікальні меристеми 3-денних проростків пшениці. Для індукції калюсогенезу використано 4 типи живильних середовищ, що містили різні концентрації 2,4-Д, піклораму, НОК, нітрату срібла. Для утворення калюсів експланти культивували на відповідному живильному середовищі у темряві протягом 21 доби за + 250С. Результати. Утворені калюси були майже прозорими, переважно рихлими та не перевищували 8 мм. Позитивний ефект на калюсогенез виявили 2,4-Д та піклорам; найменш ефективною була дія НОК. Висновки. Найбільш універсальним та оптимальним живильним середовищем для індукції калюсогенезу спельти та пшениці м’якої виявилося середовище МС, що містило 2 мг/л 2,4-Д та 10 мг/л нітрату срібла. Для нього загальний відсоток калюсогенезу був вищим від 80 %.

Ключові слова: калюсогенез, спельта (Triticum spelta L.), пшениця м’яка, калюс, апікальні меристеми.

Посилання

Shewry P. Wheat. J. of Exper. Bot. 2009. Vol. 60, № 6. P. 1537–1553. doi: 10.1093/jxb/erp058.

Meiling J., Jiantao G., Zhiwen Z., Shuaifeng G., Xueyong Z., Long M.,. Wheat functional genomics in the era of next genera-tion sequencing: An update. The Crop Journal. 2018. Vol. 6, № 1. P. 22–31. doi: 10.1016/j.cj.2017.09.003.

Satyavathi V., Jauhar P., Elias E., Rao M. Effects of growth regulators on in vitro plant regeneration in durum wheat. Crop Sci. 2004. Vol. 44. P. 1839–1846. doi: 10.2135/cropsci2004.1839.

Sticklen B., Oraby F. Invited review: shoot apical meristem: a sustainable explant for genetic transformation of cereal crops. J. In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant. 2005. Vol. 41. P. 187–200. doi: 10.1079/IVP2004616.

Sears R., Deckard E. Tissue culture variability in wheat: callus induction and plant regeneration. J. Crop Science. 1982. Vol. 22, № 3. Р. 546–550. doi: 10.2135/cropsci1982.0011183X002200030027x.

Anwaar A., Heng Z., Wengling W., Sticklen M.B. Shoot apical meristem: in vitro regeneration and morphogenesis in wheat (Triticum aestivum L.). J. In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant. 2002. Vol. 38. P. 163–167. doi: 10.1079/IVP2001267.

Wu L., Wei Y., Zheng Y. Effects of silver nitrate on the tissue culture of immature wheat embryos. Rus. J. of Plant Phys. 2006. Vol. 53, № 4. P. 530–534. doi: 10.1134/S1021443706040157.

Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. J. Phys. Plant. 1962. Vol. 15. P. 473–497. doi: 10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x.

Gamborg O., Miller R., Ojima K. Nutrient requirements of suspension cultures of soybean root cells. J. Exp. Cell Res. 1968. Vol. 50, № 1. P. 151–158. doi: 10.1016/0014-4827(68)90403-5.