Вплив передпосівного опромінення насіння на солестійкість нута баранячого

  • Е. С. Джафаров Інститут радіаційних проблем Національної академії наук Азербайджану, Азербайджан, АZ 1143, Баку, вул. Б. Вагабзаде, 9
  • М. З. Веліджанова Інститут радіаційних проблем Національної академії наук Азербайджану, Азербайджан, АZ 1143, Баку, вул. Б. Вагабзаде, 9
  • Дж. Р. Оруджева Інститут радіаційних проблем Національної академії наук Азербайджану, Азербайджан, АZ 1143, Баку, вул. Б. Вагабзаде, 9
DOI: https://doi.org/10.7124/visnyk.utgis.16.2.1052
Ключові слова: Cicer arietinum L., передпосівне опромінення насіння, сольовий стрес, антиоксидантні ферменти

Анотація

Мета. Метою дослідження було вивчення впливу сольового стресу на зростання і розвитку нуту баранячого, насіння якого перед посівом опромінювали γ-опроміненням при різних дозах. Фізіологічний стан досліджуваної рослини при цьому оцінювали на основі функціонування антиоксидантних ферментів системи захисту. Методи. Для визначення активності антиоксидантних ферментів використано методику, розроблену в роботах Кумар, Кновлес і Накано, Асада. Результати. Виявлено, що в умовах сольового стресу антиоксидантні ферменти, функціонують, в певній мірі, взаємопов’язано і координовано. Висновки. Зроблено припущення, що виживання проростків нуту баранячого в сольових умовах забезпечується злагодженою роботою системи антиоксидантного захисту.
Ключові слова: Cicer arietinum L., передпосівний опромінення насіння, сольовий стрес, антиоксидантні ферменти

Посилання

Kulikov N.V., Alshchits LK, Pozolotin A.A. et al. Changes in the radiosensitivity of plants as a result of prior radiation exposure. Radiobiology. 1971. Vol. 11(4). P. 630-632.

Lakin G.F. Biometrics. Moscow: Science, 1990. 352 p.

Levin V.I. Agro ecological effects of exposure to plant seeds of electromagnetic fields of various modalities: avtoref. diss. Dr. biol. sciences. Moscow, 2000a. 36 p.

Levin V.I. Agroecological aspects of presowing treatment of seeds of agricultural crops with gamma rays (ed. by N.P. Kuznetsov). Moscow: VNII "Agroecoinform". 2000b. 221 p.

Obozny A.I., Kolupaev Yu.E., Shvidenko N.V., Weiner A.A. Dynamics of the activity of antioxidant enzymes in the cross-adaptation of wheat germ to hyperthermia and osmototic shock. Bulletin of the Kharkov National Agrarian Institute. Series Biol. 2012. Vol. 26(2). P.71-84.

Radyukina N.L., Kartashov A.V., Ivanov Yu.V. et al. Comparative analysis of the functioning of protective systems in representatives of halophytic and glycophytic flora under salinization conditions. Plant physiology. 2007. Vol. 54. P.902-912.

Churyukin R.S., Geraskin S.A. The effect of irradiation (60Co) of barley seeds on the development of plants in the early stages of ontogenesis. Radiation and Risk. 2013. Vol. 22(3). P. 80-92.

Shevyakova N.I., Bakulina E.A., Kuznetsov Vl. B. The antioxidant role of proline in halophytes Mesembryanthemum crystallinum is the response to short-term superoxide stress generated by paraquat. Plant physiology. 2009. Vol.56(5). P.1-7.

Alwan A., Hussein Kh., Jaddoa Kh. Effect of sodium chloride on response of two wheat cultivars (Triticum aestivum L.) at germination and early seedling stages. International Journal of Applied Agricultural Sciences. 2015. Vol. 1(3). P.60-65.

Ashraf M., Harris P.J.C. Photosynthesis under stressful environments: An overview. Photosynthetica. 2013. Vol. 51(2). P.163-190.

Caverzan A., Passaia G., Rosa S.B., et al. Plant Responses to stresses: role of ascorbate peroxidase in the antioxidant protection. Genetics and Molecular Biology. 2012. Vol. 35(4). P. 1011-1019.

Kaholi B., Borgi Z., Hannachi Ch. Effect of sodium chloride on the germination of the seeds of a collection of carrot accessions (Daucus carota L.) cultivated in the region of Sidi Bouzid. Journal of Stress Physiology & Biochemistry. 2014. Vol.10(3). P. 28-36.

Kumar C.N., Knowles N. Changes in lipid peroxidation and lipolitic and free - radical scavenging enzyme during aging and sprouting of Potato (Solanum tuberosum L.) seed tubers. Plant Physiol. 1993. Vol/ 102. P. 115-124.

Mika P., Oberle D., Gandemi A. Sabou M. Foundations for service Ontologies: Aligning OWL – S to DOLSE, www04.2004.

Mishra S., Jha A.B., Dubey R.S. Arsenite treatment induces oxidative stress, uprequlates antioxidant system and causes phytochelatin synthesis in rice seedling. Protoplasma. 2011. Vol. 248(3). P. 565-577.

Mostafa H., Mohammad M.S.A., Mojtaba K., Faezch G. Responses of growth and antioxidant systems in Carthamus tinctorius L. under water deficit stress. Acta Physiol. Plant. 2011. Vol. 33. P.105-112.

Nakano Y., Asada K. Hydrogen peroxide is scavenged by ascorbate peroxidase in spinach chloroplasts. Plant. Cell. Physiol. 1981. Vol. 22. P. 867-880. doi: 10.1134/S102144371101016X

Saglama A. N., Saruhan R. T., Kadioglua A. The relations between antioxidant enzymes and chlorophyll fluorescence parameters in common bean cultivars differing in sensitivity to drought stress. Russ. J. Plant Physiol. 2011. Vol. 58. P. 60–68. doi: 10.1134/S102144371101016X

Tsegay B., Gebreslassie B. The effect of salinity (NaCl) on germination and early seedling growth of Lathyrus sativus and Pisum sativum var. abyssinicum. African Journal of Plant Science. 2014. Vol. 8(5). P.225-231. doi: 10.5897/AJPS2014.1176

Wolff S., Afzal V., Wiencke J.K., Olivieri G., Michaeli A. Human lymphocytes exposed to low doses of ionizing radiations become refractory to high doses of radiation as well as to chemical mutagens that induce double-strand breaks in DNA. Int. J. Radiat. Biol. Phys. Chem. Med. 1988. Vol. 53(1). P.39-48.

Zhong-Guang Li, Ming Gong. Mechanical stimulation-induced cross-adaptation in plants: An overview. J. Plant Biol. 2011. Vol 54. P.358-364. doi: 10.1007/s12374-011-9178-3