Антифунгальна та рістрегулююча дія нових металоорганічних сполук

  • О. В. Башта Національний університет біоресурсів і природокористування України, Україна, 03041, м. Київ, вул. Героїв оборони, 15
  • Л. П. Пасічник Національний університет біоресурсів і природокористування України, Україна, 03041, м. Київ, вул. Героїв оборони, 15
  • Н. М. Волощук Національний університет біоресурсів і природокористування України, Україна, 03041, м. Київ, вул. Героїв оборони, 15
  • Г. Г. Репіч Інститут загальної та неорганічної хімії НАН України, Україна, 03680, м. Київ, пр-т Академіка Палладіна, 32/34
  • О. О. Жолоб Інститут загальної та неорганічної хімії НАН України, Україна, 03680, м. Київ, пр-т Академіка Палладіна, 32/34
  • О. В. Васильченко Інститут молекулярної біології і генетики НАН України, Україна, 03143, м. Київ, вул. Заболотного, 150
  • О. С. Сорокін Інститут молекулярної біології і генетики НАН України, Україна, 03143, м. Київ, вул. Заболотного, 150
  • Т. В. Ширина Інститут молекулярної біології і генетики НАН України, Україна, 03143, м. Київ, вул. Заболотного, 150
  • С. І. Орисик Інститут молекулярної біології і генетики НАН України, Україна, 03143, м. Київ, вул. Заболотного, 150
  • Л. Г. Пальчиковська Інститут молекулярної біології і генетики НАН України, Україна, 03143, м. Київ, вул. Заболотного, 150
DOI: https://doi.org/10.7124/visnyk.utgis.16.2.1051

Анотація

Мета даної роботи полягала у дослідженні нових хелатних комплексів платини, паладію та міді з різними органічними лігандами щодо антифунгальної дії по відношенню до фітопатогенних грибів роду Fusarium та визначенні характеристик їхнього впливу на енергію проростання і схожість насіння зернових культур. Методи. Антифунгальну активність визначали in vitro методом дифузії в агар (метод «колодязів»). Тест-організмами слугували чисті культури грибів роду Fusarium — F. culmorum 3260/4, F. verticillioides та F. sporotrichioides. Визначення енергії проростання та схожості зернових культур здійснювали відповідно до вимог Державного стандарту. Результати. За результатами первинного скринінгу виявлено, що паладієвий комплекс Н впливає на два штами грибів роду Fusarium, причому по відношенню до штаму F. culmorum 3260/4 він проявляє фунгіцидну, а до F. verticillioides фунгістатичну дію із зонами затримки росту 25 мм та 20 мм відповідно. Мідний комплекс 2 показав незначну фунгіцидну дію щодо штаму F. culmorum 3260/4 (зона затримки росту 12 мм). Обробка насіння озимої пшениці, ярого ячменю та кукурудзи показала, що комплекси Н і 2 є менш токсичними ніж препарат порівняння — комерційний фунгіцид тебуконазол. Комплекси Н і 2 мали значно менший негативний вплив на енергію проростання всіх тест-культур ніж тебуконазол. Щодо схожості насіння, то мідний комплекс 2 проявляв помітну рістстимулюючу дію порівняно з досліджуваним насінням злаків в умовах проростання без обробки препаратами (вода). Висновки. Досліджувані комплекси можуть розглядатися як перспективні антифунгальні агенти з рістрегулюючими властивостями. Надалі буде проведена спрямована модифікація структури комплексів з метою отримання більш ефективних сполук із заданими властивостями.
Ключові слова: металоорганічні сполуки, антифунгална та рістрегулююча дія.

Посилання

Berestetskyi O. A. Phytotoxic properties of soil microorganisms. Ukrains’kyi botanichnyi zhurnal. 1994. No2,3. P. 134–144.

Berestetskyi O. O. The simple method detection of phytotoxic substances produced by microorganisms. Mikrobiolohichnyi zhurnal. 1972. Vol. 34(6). P. 798–799.

Studying of specific activity of antifungal therapeutics. Methodical recommendations / DFTs MOZ Ukrainy; uklad. : Iu. L. Volians’kyi, I. S. Hrytsenko, V. P. Shyrobokov ta in. Kyiv. 2004. 38 p.

DSTU 4138-2002 Crop seeds. Seed test methods. [Chynnyi vid 2002-12-28]. Vyd. ofits. Kyiv : Derzhspozhystandart Ukrainy, 2003. 173 p.

Markov I. P., Pasichnyk L. P., Hentosh D. T. Praktykum z osnov naukovykh doslidzhen’u zakhysti roslyn: navch. posibnyk / Kyiv: AhrarMediaHrup, 2015. 167 p.

Parfeniuk A. I. Voloshchuk N. M. Formation of the phytopathogenic inoculum in the agrophytocenosis. Ahroekolohichnyi zhurnal. 2016. No 4. P. 106–114.

Anitha S. R., Savitha G. Impact of mancozeb stress on seedling growth, seed germination, chlorophyll and phenolic contents of rice cultivars. International Journal of Science and Research (IJSR). 2015. Vol. 4(7). P. 292–296.

Baenas N., Garcia-Viguera C., Moreno D. A. Elicitation: A tool for enriching the bioactive composition of foods. Molecules. 2014. Vol. 19. P. 13541–1356. doi: 10.3390/molecules190913541

Etienne P., Diquelou S., Prudent M., Salon Ch., Maillard A., Ourry A. Macro and micronutrient storage in plants and their remobilization when facing scarcity: the case of drought. Agriculture. 2018. Vol. 8. P. 14.

Jenkins S. G., Schuetz A. N. Current concepts in laboratory testing to guide antimicrobial therapy. Mayo Clinic Proceedings. 2012. Vol. 87(3). P. 290–308. doi: 10.1016/j.mayocp.2012.01.007

Hu. M., Jiang. M., Wang. P., Mei. S., Lin. Y., Hu. X., Shi. Y., Lu. B., Dai. K. Selective solid-phase extraction of tebuconazole in biological and environmental samples using molecularly imprinted polymers. Analytical and Bioanalytical Chemistry. 2007. Vol. 387. P. 1007–1016. doi: 10.1007/s00216-006-1004-2

Matysiak K., Kaczmarek S. Effect of chlorocholine chloride and triazoles — tebuconazole and flusilazole on winter oilseed rape (Brassica napus var. oleifera L.) in response to the application term and sowing density. Journal of plant protection research. 2013. Vol. 53(1). P. 79–88. doi: org/10.2478/jppr-2013-0012

Moseke C., Gelinsky M., Groll J., Gbureck U. Chemical characterization of hydroxyapatite obtained by wet chemistry in the presence of V, Co, and Cu ions. Materials Science and Engineering C Materials for Biological Application. 2013. Vol. 33(3). P. 1654–1661. doi: 10.1016/j.msec.2012.12.075

Yu L., Chen M., Liu Y., Gui W., Zhu G. Thyroid endocrine disruption in zebrafish larvae following exposure to hexaconazole and tebuconazole. Aquatic Toxicology. 2013. Vol. 138. P. 35–42. doi: 10.1016/j.aquatox.2013.04.001